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紡織生物助劑果膠酶酶活的測(cè)定方法

來(lái)源:中國(guó)紡機(jī)網(wǎng)編輯部 發(fā)布時(shí)間:2013年10月18日

1引言

隨著人們對(duì)健康環(huán)保紡織品需求的增加以及各國(guó)政府對(duì)環(huán)境保護(hù)強(qiáng)制力度的加大,在紡織印染行業(yè)中一種新型的紡織助劑———生物酶制劑的應(yīng)用逐漸發(fā)展起來(lái)。目前,一種基于果膠酶的新型紡織生物助劑正在應(yīng)用推廣中,它主要用于棉、麻的前處理工藝。由于紡織企業(yè)多數(shù)對(duì)果膠酶的生物特性不甚了解,在工藝應(yīng)用過(guò)程中缺乏相應(yīng)的檢測(cè)手段,使其推廣受到限制。酶活力(活性)是衡量酶生物活性及含量的重要指標(biāo),因此,建立適用于紡織行業(yè)的果膠酶酶活檢測(cè)方法,是十分迫切和必要的。

2果膠酶的酶促作用機(jī)理

果膠酶是一類(lèi)復(fù)合酶,是指分解果膠質(zhì)的多種酶的總稱(chēng)。我們測(cè)定的酶活值通常是這一類(lèi)復(fù)合酶協(xié)同作用的綜合結(jié)果。果膠酶可分為兩大類(lèi):解聚酶和果膠酯酶。解聚酶主要是通過(guò)水解作用和反式消去作用,切斷果膠和果膠酶分子α-1,4糖苷鍵,將果膠分子降解為小分子。果膠酯酶的作用是使果膠分子中的甲酯水解,最后形成果膠酸。

果膠質(zhì)主要是由D-半乳糖醛酸以α-1,4糖苷鍵連接形成的直鏈狀聚合物。部分D-半乳糖醛酸上的羧基被甲醇酯化、形成甲酯,或被一種或多種堿部分或全部中和。果膠質(zhì)在植物的細(xì)胞組織中起著“粘合”作用,在棉纖維的初生胞壁中,果膠質(zhì)含量約占9%,而麻纖維則更高。

通過(guò)果膠酶的作用,將果膠質(zhì)降解為小分子物質(zhì),從纖維中游離出來(lái),可使與其粘合在一起的其它雜質(zhì)(如蠟質(zhì)、蛋白質(zhì)、灰份等)與纖維素徹底分開(kāi),達(dá)到棉精煉或麻脫膠的目的。

對(duì)于紡織行業(yè),需要的是將果膠催化水解成可游離出纖維的、小分子物質(zhì)的果膠酶活性(力),因此,主要測(cè)定解聚酶的活力。解聚酶對(duì)果膠分子的酶促催化作用表現(xiàn)為,每切斷一個(gè)果膠分子的α-1,4糖苷鍵,就會(huì)形成一個(gè)還原性醛基。通過(guò)測(cè)定這些還原性醛基生成的量,即可判定解聚酶的酶活力。

3測(cè)定酶活力(性)的基本原理

酶作為一種生物催化劑,其酶活力值是與其催化效率及有效(即有生物活性)酶的含量相關(guān)的。酶活力是酶在單位時(shí)間內(nèi)將底物轉(zhuǎn)化為反應(yīng)產(chǎn)物的

能力,以U(mol/時(shí)間)表示,底物即是酶催化的反應(yīng)物。通常,酶制劑的活力是以U/g酶制劑(或U/mL酶制劑)表示,把酶制劑的量和活力聯(lián)系在一起,稱(chēng)為“比活力”。在特定條件下,通過(guò)測(cè)定單位量的某種酶制劑在單位時(shí)間內(nèi)催化足夠量底物生成反應(yīng)產(chǎn)物的量,即可測(cè)出此酶制劑的比活力。

根據(jù)酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)的米氏學(xué)說(shuō),從酶被底物飽和的現(xiàn)象出發(fā),按照“穩(wěn)態(tài)平衡”假說(shuō)的設(shè)想,可推導(dǎo)出如下公式:

產(chǎn)物生成速率=k3[總酶][底物]/([底物]+km)(1)

式中:[總酶]———酶的總濃度(mol/mL);

[底物]———底物濃度(mol/mL);

k3———在酶促反應(yīng)的第二步,形成最終產(chǎn)物的速率常數(shù);

km———米氏常數(shù)(mol/mL),其值是當(dāng)酶反應(yīng)速率達(dá)到最大反應(yīng)速率一半時(shí)的底物濃度。

要估計(jì)[總酶],首先要固定所有可控制的獨(dú)立變量,如pH值、溫度等。

當(dāng)[底物]>>Km時(shí),底物對(duì)反應(yīng)速率的影響可忽略(酶飽和),酶促反應(yīng)達(dá)到最大反應(yīng)速率Vmax,其結(jié)果是:

產(chǎn)物生成速率=k3[總酶]=Vmax=U

U就成為總酶量的一種測(cè)量。因此,可以通過(guò)測(cè)定U來(lái)反映酶制劑中有效酶蛋白的含量。

4果膠酶酶活的測(cè)定方法概述和比較

測(cè)定果膠酶酶活的方法有很多,但基本上都是利用酶促分解果膠產(chǎn)生的粘度下降或生成的還原性醛基來(lái)測(cè)定果膠酶酶活。這些方法概括起來(lái)主要有粘度降低法、滴定法和分光光度法3種。本文分別選取一種較典型的測(cè)定方法加以介紹。

4.1粘度降低法

4.1.1原理

果膠溶于水后形成粘稠狀溶液,其粘度和溶解度與其聚合和酯化程度有關(guān)??梢岳霉z的這種性質(zhì),測(cè)其酶活力。即在一定溫度、酶濃度下和一定反應(yīng)時(shí)間內(nèi),測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)果膠溶液粘度的降低率。

4.1.2操作方法

浴中保溫10min后,加入1mL酶液,繼續(xù)保溫,在不同時(shí)間分別測(cè)定反應(yīng)混合液流出粘度計(jì)小球的時(shí)間。對(duì)照實(shí)驗(yàn)采用經(jīng)熱處理已失活的酶液。

4.1.3計(jì)算

粘度下降百分?jǐn)?shù)可用下式表示:

粘度

下降(%)=100(To-T)/(To-Tα)(2)

式中:T、To和Tα分別為反應(yīng)混合液、對(duì)照混合液和緩沖液的流出時(shí)間(s)。

酶溶液要預(yù)先稀釋,使粘度降低范圍在20%~80%。在此范圍內(nèi),酶濃度對(duì)數(shù)與粘度降低率成正比。以酶作用時(shí)間為橫坐標(biāo)、粘度下降百分?jǐn)?shù)為縱坐標(biāo)做標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),在圖中查出粘度下降50%時(shí)對(duì)應(yīng)酶的作用時(shí)間(T1/2)。在上述條件下,引起粘度下降50%的酶量為10個(gè)果膠酶活力單位,即酶活單位=10/(T1/2/3600)。

4.2滴定法

4.2.1原理

果膠酶徹底水解果膠,生成半乳糖醛酸;半乳糖醛酸可與碘(過(guò)量)反應(yīng)。反應(yīng)后剩余的碘可用硫代硫酸鈉溶液滴定,據(jù)此可得出酶解反應(yīng)產(chǎn)生的半乳糖醛酸的量。以生成半乳糖醛酸的量衡量果膠酶的活力。

4.2.2測(cè)定方法

取1%果膠溶液10mL,加入到5mL酶液和5mL水,調(diào)pH至3.5,在50℃水浴中保持2h,取出加熱煮沸。冷卻后,取5mL反應(yīng)液移入碘量瓶中,加1M碳酸鈉溶液1mL,0.1N碘液5mL,搖勻,加塞,于室溫下放置20min,加2N硫酸2mL,用0.05N硫代硫酸鈉滴定至淡黃色,加0.5%淀粉指示劑1mL,繼續(xù)滴定至藍(lán)色消失為止。記錄所消耗的硫代硫酸鈉毫升數(shù)A??瞻自囼?yàn)用10mL果膠溶液、10mL水,不加酶液,不經(jīng)保溫,直接取此混合物5mL于100mL三角瓶中用于滴定,記錄消耗的硫代硫酸鈉毫升數(shù)B。

4.2.3計(jì)算

在上述條件下,1h酶促轉(zhuǎn)化果膠、生成1mg當(dāng)量游離半乳糖醛酸所需的酶量定為一個(gè)酶活單位。

每毫升酶液的活力單位=(B-A)N×0.51×20.(5×2×5)(3)

式中:N———硫代硫酸鈉的當(dāng)量濃度;

0.51———1mg當(dāng)量硫代硫酸鈉相當(dāng)于0.51mg當(dāng)量的半乳糖醛酸;

20———分解果膠反應(yīng)液的總體積數(shù);

5、2、5———分別表示反應(yīng)中加入酶液的毫升數(shù)、反應(yīng)時(shí)間、滴定時(shí)所取反應(yīng)液的毫升數(shù)。

4.3分光光度法

4.3.1原理

果膠酶分解

果膠,產(chǎn)生帶有還原性醛基的還原糖(以半乳糖醛酸計(jì)),一些顯色劑可與其發(fā)生顯色反應(yīng)。根據(jù)顏色深淺的不同,可以通過(guò)分光光度計(jì)測(cè)定果膠酶酶活值的大小。本文以最常用的DNS比色法介紹此檢測(cè)方法,其顯色劑為3,5-二硝基水楊酸。

4.3.2操作方法

取0.5%果膠溶液0.5mL加入到0.5mL酶液中,搖勻。在50℃水浴中準(zhǔn)確反應(yīng)0.5h,取出后,迅速在沸水浴中加熱5min,冷卻。取0.5mL反應(yīng)液移入加有0.5mLDNS試劑的試管,加4mL蒸餾水,搖勻,在沸水浴中加熱5min,迅速冷卻。用分光光度計(jì)在540nm處測(cè)其吸光度值。參比液配制:加熱滅活5min的0.5mL的稀釋酶液與0.5mL0.5%果膠溶液充分混合。

4.3.3計(jì)算

采用標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)法,配制一系列已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液,在540nm處測(cè)定吸光度(A),以葡萄糖濃度(C)為橫坐標(biāo)、吸光度(A)為縱光標(biāo)作A.C標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)(參見(jiàn)5.2節(jié)圖2)。由標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)可得公式:

A=斜率×C(mg葡萄糖/mL)(4)

未知試液測(cè)定吸光度值A后,可通過(guò)上式求得C(mg葡萄糖/mL)。

在上述條件下,每小時(shí)內(nèi)每毫升果膠酶酶促轉(zhuǎn)化果膠生成1mg當(dāng)量還原糖(以半乳糖醛酸計(jì))所需的酶量定義為一個(gè)酶活單位。即:

果膠酶活(mg半乳糖醛酸/mL·h)=酶液稀釋倍數(shù)×C(mg葡萄糖/mL)×2×194/180(5)

式中:194/180———葡萄糖換算成半乳糖醛酸的量;

2———測(cè)定中稀酶液被0.5%果膠溶液稀釋的倍數(shù)。

4.43種方法的比較

將粘度降低法用來(lái)測(cè)定果膠酶的復(fù)合酶活力比較準(zhǔn)確,但操作過(guò)程也相對(duì)復(fù)雜,且測(cè)定靈敏度不高。滴定法設(shè)備使用簡(jiǎn)單,測(cè)試重現(xiàn)行好,準(zhǔn)確度高,但測(cè)定時(shí)間長(zhǎng),過(guò)程較繁瑣,試劑用量較大。而分光光度法測(cè)定的靈敏度、準(zhǔn)確度均高,重現(xiàn)性好,試劑用量少,尤其是操作省時(shí)、簡(jiǎn)便。對(duì)于上述3種測(cè)定方法,根據(jù)紡織行業(yè)的特點(diǎn),筆者認(rèn)為分光光度法更適于紡織工作者應(yīng)用。下面重點(diǎn)探

討DNS比色法在實(shí)際應(yīng)用中的一些具體問(wèn)題。

5應(yīng)用DNS比色法測(cè)定果膠酶酶活

5.1果膠溶液的配制以及酶液的稀釋

果膠溶液的配制濃度以及酶液的稀釋倍數(shù)是相互聯(lián)系的兩個(gè)數(shù)據(jù),它們的確定對(duì)酶活測(cè)定結(jié)果的正確性起著關(guān)鍵作用。通過(guò)完成以下試驗(yàn),可以確定有關(guān)參數(shù)條件。

5.1.1材料與方法

5.1.1.1儀器與試劑

UV—9200分光光度計(jì);果膠(Sigma)、果膠酶制劑(NOVO)、3,5-二硝基水楊酸、巴比妥酸、巴比妥鈉。

5.1.1.2溶液配制

DNS試劑:將6.3g3,5-二硝基水楊酸、262mL2mol/LNaOH加到500mL含182g酒石酸鈉的熱水溶液中,再加5g苯酚及5g亞硫酸鈉,待溶解、冷卻后,加蒸餾水定容至1000mL,貯于棕色瓶中,一周后即可使用。

5.1.1.3配制巴比妥緩沖液(pH=8.6)

稱(chēng)取1.84g巴比妥酸,置于56~60℃水中溶化,然后加入10.3g巴比妥鈉,加蒸餾水定容至1000mL。

5.1.1.4配制0.5%果膠溶液

準(zhǔn)確稱(chēng)取0.5g果膠于燒杯中,用巴比妥緩沖液(pH=8.6)溶解、稀釋定容至100mL。

5.1.2制作果膠酶稀釋倍數(shù)與吸光度關(guān)系曲線(xiàn)

分別按表1的稀釋倍數(shù)用蒸餾水稀釋果膠酶,將稀釋酶液按4.3.2測(cè)定吸光度值,以果膠酶稀釋倍數(shù)的倒數(shù)為橫坐標(biāo),吸光度(A)為縱坐標(biāo)作關(guān)系曲線(xiàn)(見(jiàn)圖1)。


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